- Wasserqualität. - Herstellung von Medien. - Zugabe von Supplementen. - Zugabe von Blut. - Gießen von Agarplatten. - Herstellung von Schrägagar. - Fehlerquellen bei der Herstellung von Medien. - Qualitätskontrolle von Medien. - Biologische Qualitätskontrolle. - Physikalische Qualitätskontrolle. - Mikrobiologische Arbeitstechniken. - Steriles Arbeiten. - Vortrocknen von Petrischalen. Medizinische Bakteriologie und Infektiologie von Roland Werk - faltershop.at. - Beimpfen von Medien. - Flächenmäßiges Beimpfen von Agarplatten. - Beimpfen von Schrägagar-Röhrchen. - Beimpfen eines Schüttelagars. - Beimpfen von Schichtagar. - Beimpfen von Festmedien auf Flüssigmilieu. - Vorbereiten des Arbeitsplatzes. - III Verarbeitung von klinischen Materialien und Bedeutung der Erregerspektren von Krankheitsbildern für die Diagnostik. - Wachstumskinetik und Wachstumsphysiologie. - Erregerspektrum bei infektiologischen Krankheitsbildern. - Tonsillitis, Pharyngitis, Stomatitis, Parotitis, Peritonsillarabszeß. - Tonsillitis/Pharyngitis. - Keimspektrum. - Stomatitis/Parotitis. - Peritonsillarabszeß/Retropharyngealabszeß.
Zwei erschreckende Ereignisse haben mir diesen Aspekt vor Augen geführt. So starb eine 86jährige nicht moribunde Frau an einer erst nicht erkannten, dann bagatellisierten und zu spät diagnostizierten Salmo nellose (1989! ). Ebenso tragisch ist der Tod einer 28jährigen Frau mit einer Therapie-resistenten Sinusitis, die akut exazerbierte und dann foudroyant mit Sepsis und Meningitis tödlich verlief. Inhaltsverzeichnis Literatur. - I Allgemeine Grundlagen für ein medizinisch-mikrobiologisches Laboratorium. - Gefahrenklassifikation von Mikroorganismen. - Rechtliehe Grundlagen. - Beschaffenheit medizinisch-mikrobiologischer Laboratorien. - Labororganisation. - Geräteausstattung. - Medienküche. - Entsorgung infektiösen Materials. - Literatur. - II Das mikrobiologische Laboratorium. - Sterilisation. - Heißluftsterilisation. - Sterilisation durch feuchte Hitze. - Technische Durchführung. Verdünnungsausstrich - DocCheck Flexikon. - Sterilfiltration. - Bakteriologische Wachstumsmedien. - Zusammensetzung bakteriologischer Wachstumsmedien.
Das frische Roggensubstrat kann nun mit den fertig besiedelten Körnern beimpft werden. Verschließen Sie den Substratsack mit einem Schweißgerät oder einem Klebeband. Schütteln Sie nun die beimpften Gläser/Säcke gut durch, damit sich die besiedelten unter die unbesiedelten Teile mischen. Zum Durchwachsen wird der Sack stehend mit dem Filter nach oben an einem sauberen, dunklen Ort bei der für die jeweilige Pilzgattung empfohlenen Temperatur gelagert. Laborjournal - Tipps & Tricks - Agarplatten im Schnelldurchlauf. Für genügend Frischluft im Brutraum oder -kasten muss gesorgt werden. Literaturnachweis: "Mycelium running/ How mushrooms can help save the world", Paul Stamets; Ten Speed Press, Berkeley/Toronto; "The Mushroom Cultivator: A Practical Guide to Growing Mushrooms at Home", Paul Stamets, Agarikon Press; First Edition (December 1983); "Growing Gourmet and Medicinal Mushrooms", Paul Stamets, Ten Speed Press, Berkeley/Toronto;
Schneiden Sie mit dem Skalpell sternförmig durch den mit Pilzmyzel besiedelten Agar. Sie erhalten so 16 kleine Stücke. Öffnen Sie den Deckel des Roggenglases bzw. die Oberseite des Autoklav-Bags, spießen Sie die Agarstücke mit einem sauberen Skalpell mit Klinge auf und transferieren Sie sie vorsichtig auf das sterilisierte Roggensubstrat. Danach wird das Glas/der Sack sofort verschlossen. Durch leichtes Schütteln werden die Agarstücke gleichmäßig im Roggensubstrat verteilt, um ein schnelles und gleichmäßiges Durchwachsen zu erzielen. Falls Myzelstücke am Glas/am Sack kleben bleiben, können Sie diese durch leichtes Klopfen von außen wieder lösen, damit sie wieder ins Substrat gemischt werden können. Myzelwachstum Die fertig beimpften Gläser oder Säcke werden für die Wachstumsphase des Myzels an einem sauberen, dunklen Ort bei der für die jeweilige Pilzgattung empfohlenen Temperatur gelagert. Im Brutraum oder -kasten muss für ausreichend Frischluftzufuhr gesorgt werden. Schon wenige Tage später kann man beobachten, wie sich das Myzel der Agarstücke auf das umliegende Korn ausbreitet.
So können einige Mittel wie Dünger auf den Boden ausgebracht werden (z. B. Holganix). Sie enthalten sogenannte Probiotics, einen Mix aus nützlichen Mikroorganismen, die Pflanzenwachstum und -gesundheit fördern und den Einsatz von chemischen Pflanzenschutzmitteln überflüssig machen sollen. Bei anderen Anwendungen wird Saatgut mit nützlichen Mikroorganismen – sogenannten Biologicals - ummantelt ( Coating). Mit aufwändigen Screening -Verfahren wird unter den Milliarden von Mikroorganismen gezielt nach nützlichen Arten gesucht. So hat z. die KWS Saat SE Zuckerrübensaatgut entwickelt, das mit verschiedenen Bakterienstämmen umhüllt ist, die bei Trockenheit und auf wenig fruchtbaren Böden den Ertrag erhöhen können. Nach der Aussaat vermehren sich die Bakterien im feuchten Boden, besetzen den Lebensraum rund um das Saatgutkorn und bilden bestimmte Stoffwechselprodukte, die die Keimlinge vor abiotischem Stress und schädlichen Pilzen schützen. Die Firma Indigo brachte als erstes kommerzielles Produkt eine Baumwolle auf den Markt, deren Saatgut vor Trockenstress geschützt ist.
Reichert man zum Beispiel das Medium mit einem bestimmten Antibiotikum an, können nur Bakterien wachsen, die resistent gegen dieses Antibiotikum sind. Manche Bakterien stellen charakteristische Stoffwechselprodukte her oder verbrauchen einen bestimmten Anteil des Nährmediums. Veränderungen in diesem Bereich kann man durch die Zugabe eines spezifischen Farbstoffs (Indikator) zum Nährmedium sichtbar machen. Auf diese Weise kann man mithilfe der Indikatornährmedien Bakterien typisieren. Bakterien benötigen zu ihrer Vermehrung keiner sexuellen Vorgänge. Sie vermehren sich vor allem durch einfache Zweiteilung. Auf diese Weise entsteht ein genetisch identischer Klon der bakteriellen Zelle. Die Zeit, die für einen Vermehrungszyklus benötigt wird (die sog. Generationszeit), schwankt zwischen 15 Minuten und 24 Stunden. E. -coli -Bakterien benötigen beispielsweise nur circa 20 Minuten für einen Vermehrungszyklus, Tuberkulosebakterien dagegen im Durchschnitt 20 Stunden. Die Wachstumsdauer beziehungsweise Generationszeit hängt neben der Bakterienart auch stark vom Milieu ab, in dem diese wächst.
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